Гибридизация нуклеиновых кислот. Нуклеиновые кислоты

Специфические характеристики любого организма зависят от определенной последо­вательности нуклеиновых кислот, содержащихся в его геноме.

Сами нуклеиновые кис­лоты состоят из цепей блоков, каждый из которых состоит из сахара (дезоксирибоза или рибоза, в зависимости от того, является ли нуклеиновая кислота ДНК или РНК), фосфоросодержащей группы и одного из четырех органических пуриновых или пири­мидиновых оснований. ДНК состоит из двух таких цепочек, расположенных в виде двойной спирали и соединенных между собой связями между органическими основа­ниями. Основания избирательно связывают аденин с тимином и гуанин с цитозином. Именно последовательность оснований делает организмы уникальными.

Разработка зондов (проб) на основе нуклеиновых кислот

Зонды на основе нуклеиновых кислот — это небольшие сегменты однонитевой нуклеи­новой кислоты, которая может быть использована для определения специфических генетических последовательностей в пробах. Зонды (пробы) могут разработаны для последовательностей ДНК или РНК. Привлекательность использования генных зон­дов в определении микроорганизмов заключается в том, что зонд, состоящий из пос­ледовательности лишь 20 нуклеотидов, уникален и может быть использован для точ­ного определения микроорганизма [52].

Чтобы обнаружить связывание зонда с ДНК или РНК определяемого микроорга­низма, он должен быть присоединен к какой-либо метке, которую легко выявить. Сначала работа выполнялась с радиоизотопными метками (например, на основе ра­диоактивного фосфора Р32), который мог быть определен авторадиографией или подсчетом сцинцилляций. Использование и утилизация радиоактивных изотопов, однако, неизбежно сопряжены с проблемами безопасности, что делает их непригод­ными для стандартных испытаний в лабораториях пищевых производств. Поэтому для широкого применения зондов на основе нуклеиновых кислот требовались иные метки.

Значительный объем исследований был посвящен мечению зондов с использова­нием связи «авидин-биотин». В основе этого приема лежит высокая специфичность связи между авидином и биотином. Зондовая последовательность нуклеиновой кис­лоты метится биотином и взаимодействует с определяемой ДНК. Затем добавляется авидин, связанный с подходящим индикатором, например, авидин-щелочной фосфатазой, и связывание затем обнаруживается по образованию окрашенного продукта в бесцветном субстрате. Применение таких новых систем мечения показало, что зонды с нерадиоактивными метками могут быть использованы для определения микроорга­низмов, но они гораздо менее чувствительны, чем системы с радиоизотопным мечением, и требуемое для определения увеличение количества клеток (по сравнению с радиоизотопной системой) доходит до 100-кратного.

Для создания неизотопных зондов с чувствительностью, приближающейся к чув­ствительности изотопных меток, было необходимо изучить в клетках альтернативные мишени для зондов. Зонды, ориентированные на клетки ДНК, прикрепляются только к нескольким участкам на хромосоме клетки определямого микроорганизма. Изучая области клеточной нуклеиновой кислоты, которые присутствуют в относительно боль­шом количестве копий в каждой клетке, и ориентируя зонды на эти участки, можно значительно увеличить чувствительность неизотопных зондов. Работа по увеличению чувствительности зондов сосредоточилась на использовании в качестве мишени РНК. РНК — это однонитевая нуклеиновая кислота, которая присутствует в клетках в раз­ных формах. В одной из форм она обнаруживается в рибосомах, которые являются частью системы синтеза белка в клетке. Такая РНК (известная как рибосомная РНК — рРНК) присутствует в клетках в большом количестве копий. Ориентируя зонды из нуклеиновых кислот на рибосомную РНК, можно существенно увеличить чувстви­тельность аналитической системы.

Пробы на микроорганизмы в пищевых продуктах

Процедуры гибридизации нуклеиновых кислот для определения патогенных бактерий в пищевых продуктах описаны для разновидностей Salmonella [35,47], Listeria [73,74], Yersinia enterocolitica [56,66], Listeria monocytogenes [38], вырабатывающей энтероток­сины Escherichia coli [55, 57], Vibrio vulnificus [87], вырабатывающей энтеротоксины Staphylococcus aureus [91], Clostridiumperfringens и Clostridium botulinum [134].

Первая промышленно выпускаемая аналитическая система для пищевых продук­тов на основе зондов из нуклеиновых кислот была представлена компанией Gene Trak Systems (г. Фрэмингхэм, штат Массачусетс, США) в 1985 году [47]. В ней использова­лись зонды, избирательные для ДНК сальмонеллы и для определения сальмонеллы в обогащенных пищевых пробах, ориентированные на хромосомную ДНК. Процедура анализа включала гибридизацию определяемой ДНК, связанной с мембранным филь­тром, и зондов, меченных фосфором-32. Общее время анализа складывалось из 40-44 ч обогащения пробы в неселективной и селективной средах и последующей процедуры гибридизации, длившейся 4-5 ч. Таким образом, полное время анализа составляло око­ло 2 сут. Проверка теста на Salmonella в США показала, что он, по меньшей мере, эквива­лентен стандартным методам, использующим культуры [49]. Компания Gene Trak созда­ла на основе подобного подхода систему гибридизационного анализа для разновидностей Listeria [73].

Комплекты зондов компании Gene Trak были аттестованы в США, и ряд лаборато­рий начал их использовать. В Европе, однако, в лабораториях пищевых производств наблюдалось нежелание использовать радиоизотопы. Кроме того, фосфор-32 имеет малый период полураспада, что вызывало сложности при транспортировке комплек­тов в отдаленные районы. В 1988 г. компания Gene Trak начала поставлять зонды с неизотопным мечением для Salmonella, Listeria и Escherichia coli и колориметрической системой обнаружения. Для преодоления снижения чувствительности, вызванной использованием неизотопных меток, целевой нуклеиновой кислотой в клетке была рибосомная РНК. Количество копий этой нуклеиновой кислоты на одну клетку оце­нивается в 500-20 ООО.

Колориметрический гибридизационный анализ основан на реакции гибридизации в жидкости между определяемой рРНК и двумя отдельными олигонуклеотидами с помощью ДНК-зондов (иммобилизованного зонда и зонда-сигнализатора), специфи­ческими для определяемого микроорганизма. Молекулы иммобилизованного зонда с помощью ферментов дополнены полимером, состоящим примерно из 100 остатков дезоксиаденозина монофосфата. Молекулы зонда-сигнализатора химически помеча­ют гаптен флуоресцеином.

После соответствующего обогащения исследуемого продукта проба переносится в пробирку, и микроорганизмы разлагаются, выделяя определяемую рРНК. Затем до­бавляют иммобилизованные, и зонды-сигнализаторы проводят гибридизацию. Если определяемая рРНК присутствует в пробе, то происходит гибридизация между зонда­ми и определяемой рРНК. Раствор, содержащий комплекс «зонд-определяемый мик­роорганизм», затем приводят в контакт с датчиком, содержащим связанный гомопо­лимер дезокситимидин (в условиях, при которых возможна гибридизация между полимером полидезоксиаденозином иммобилизованного зонда и полидезокситимидином на датчике). Негибридизованные нуклеиновые кислоты и остатки клеток затем смывают, оставляя иммобилизованный комплекс ДНК-РНК прикрепленным к по­верхности датчика. Связанный зонд-сигнализатор с флюоресцеином определяется пу­тем добавления антифлюоресцеинового антитела, конъюгированного с ферментом пероксидазы. Последующее добавление хромогенного субстрата для фермента приводит к появлению окраски, которая может измеряться спектрофотометром.

Результаты колориметрических анализов [88] показали хорошее совпадение меж­ду зондовыми методами и традиционными, основанными на культурах для Salmonella и Listeria. Оказалось, что чувствительность комплектов лежит между 105 и 106 опреде­ляемых микроорганизмов на 1 мл, в связи с чем важным этапом является процедура обогащения. После внедрения трех указанных комплектов компания Gene Trak начала выпуск систем для Staphylococcus aureus, разновидностей Campylobacter и Yersinia enterocolitica.

Серийно выпускаемые зонды на основе нуклеиновых кислот для подтверждения наличия Campylobacter, Staphylococcus aureus и Listeria поставляются компанией Gen- probe (Gen Probe Inc., г. Сан-Диего, США). Эти комплекты основаны на зонде из однонитевой ДНК, комплементарной рибосомной РНК определяемого микроорганизма. После того как рибосомная РНК выделена из микроорганизма, меченый зонд ДНК соединяется с ней и образует стабильный гибрид комплементарных ДНК и РНК. Гиб­ридизированный зонд может быть обнаружен благодаря люминесценции.

Для анализа также используется метод гибридизационной защиты, основанный на использовании хемилюминесцентного сложного эфира акридина. Этот эфир реагирует с пероксидом водорода в щелочных условиях, испуская свет, который можно измерить в люминометре. Сложные эфиры акридина ковалентно связаны с синтетическими ДНК- зондами через алкиламиновую цепь. Анализ основан на дифференциальном химичес­ком гидролизе эфирной связи. Гидролиз этой связи делает акридин постоянно нехемилюминесцентным. Когда ДНК-зонд, к которому прикреплен эфир, гибридизируется с РНК-мишенью, акридин защищен от гидролиза и может поэтому стать люминесцент­ным. В комплектах для анализа на Campylobacters Listeria используются лиофилизированный реагент-зонд. Зонд Campylobacter реагирует с С. jejuni, С. coli и С. pylori; зонд Listeria реагирует с L. monocytogenes. В обоих случаях перед использованием зонда для подтверждающих испытаний необходимо значительное обогащение культур.

Оценка комплекта зондов для L. monocytogenes [21] показала, что он абсолютно специфичен к организму-мишени. Для получения положительного результата требо­валось присутствие около 106 L. monocytogenes. Данный комплект представляется бы­стрым и надежным тестом для подтверждения присутствия культуры и может исполь­зоваться непосредственно с бульоном для обогащения, тем самым дополнительно снижая продолжительность теста.

Будущее зондов

Разработка и использование зондов в пищевой промышленности в последние годы продвинулись недостаточно. Выпускаемые комплекты демонстрируют свой большой потенциал, но используются не так широко, как иммунологические тесты. Микробио­логи всегда должны учитывать полезность анализа клеточной генетической информа­ции. Возможно, однако, что достижения молекулярной биологии означают, что лучший способ получения подобной информации — это использование методов амплификации нуклеиновых кислот (например, цепной реакция полимеразы — ЦРП).

Методы амплификации нуклеиновых кислот

В последние годы разработаны и усовершенствованы несколько генетических амплификационных методов (методов усиления). Эти методы обычно опираются на биохи­мическую амплификацию клеточной нуклеиновой кислоты и могут привести к увели­чению числа копий за 2-3 ч в 107 раз. Очень быстрое увеличение количества мишеней, достигаемое с помощью методов амплификации нуклеиновых кислот, делает их иде­альными для разработки систем ускоренного обнаружения микроорганизмов. В насто­ящее время разработан ряд методов амплификации, примененных для определения микроорганизмов:

  •  цепная реакция полимеразы (ЦРП) и ее варианты, включая гнездовую ЦРП, ЦРП с обратной транскриптазой (РНК-зависимая ДНК-полимераза) и множе­ственную ЦРП;
  •  Q-бета репликаза;
  •  реакция амплификации лигазы (LAR)\
  •  амплификация транскриптов (TAS), известная также Self Sustained Sequence Replication (3SR) или амплификация на основе последовательности нуклеино­вых кислот (NASBA, Nucleic Acid Sequence Based Amplification).

Из этих амплификационных методов только ЦРП была внедрена в промышлен­ность в виде методики, основанной на комплекте для определения пищевых микроор­ганизмов. С помощью NASBA проведены различные исследования, имеется ряд работ, описывающих применение этого метода для определения пищевых патогенов, но до сих пор на рынке отсутствуют серийно выпускаемые комплекты для анализа.

Цепная реакция полимеразы (ЦРП)

ЦРП — это метод, применяемый для повторяемого in vitro ферментного синтеза специ­фических последовательностей ДНК с использованием двух коротких олигонуклеотидных праймеров Эти праймеры гибридизируются с противоположными нитями молекулы ДНК и примыкают к представляющей интерес области ДНК-мишени. ЦРП протекает через серию вторичных циклов, включающих денатурацию ДНК, отжиг праймеров и увеличение праймеров под действием полимеразы ДНК. Эти три стадии каждого цикла регулируют, изменяя температуру реакции, так как каждая стадия про­исходит только при определенных температурах. Эти изменения температуры осуще­ствляются с помощью специального прибора для термоциклирования. Продукты уве­личения праймеров после одного цикла служат матрицами для следующего цикла, и, таким образом, количество копий ДНК-мишени удваивается в каждом цикле.

Цепная реакция «обратная транскриптаза-полимераза» (ЦРОТ-П)

Эта реакция включает использование для ЦРП РНК-мишени. ЦРП должна работать на молекуле ДНК, и поэтому первоначально обратная транскриптаза используется для получения копии ДНК, после чего эта копия используется в традиционной ЦРП. Цеп­ная реакция «обратная транскриптаза-полимераза» (ЦРОТ-П) особенно хорошо под­ходит для определенных микробиологических тестов. Некоторые пищевые вирусы содержат в качестве генетического материала РНК. Поэтому, если необходимы ампли­фикация и, соответственно, определение вирусов, необходимо использовать именно ЦРОТ-П. Второе применение ЦРОТ-П — это определение жизнеспособных микроор­ганизмов. Одна из проблем, связанных с ЦРП — ее высокая чувствительность и способ­ность увеличивать очень низкие концентрации определяемой нуклеиновой кислоты. Та­ким образом, при использовании ЦРП для определения наличия или отсутствия определенного микроорганизма в пищевом продукте эта реакция может определить микроорганизм даже в том случае, если он предварительно был сделан неактивным вследствие соответствующего технологического процесса. Это может привести к оши­бочному положительному результату определения. Для преодоления этой проблемы можно использовать ЦРОТ-П, направленную на информационную РНК клетки, кото­рая производится только активными клетками и после образования имеет короткое время полураспада. Таким образом, определение специфической информационной РНК (инфРНК) с помощью ЦРОТ-П указывает на наличие жизнеспособных микро­организмов.

NASBA

NASBA — это многоферментная многократная процедура амплификации, требующая большего числа ферментов и реагентов, чем стандартная ЦРП. Ее преимущество в том, что это изотермическая процедура, и, следовательно, все стадии реакции происходят при одной температуре, что делает ненужным устройство для термоциклирования. Опубликован ряд работ по применению NASBA для определения пищевых патогенов (см., например, [128]), но эта процедура еще не нашла широкого применения.

Промышленные комплекты на основе ЦРП

В настоящее время комплекты на основе ЦРП для определения микроорганизмов в пищевых продуктах выпускаются тремя фирмами. В комплекте ВАХ (фирма Qualicon, США) используются таблетированные реагенты, традиционное устройство для термо­циклирования и метод, основанный на электрофорезе в геле. Пробы с положительной реакцией видны как полосы на геле для электрофореза. Выпускаются комплекты ВАХ для Salmonella [9], Listeria рода Listeria monocytogenes, и для E. coli 0157:Я7. Анализы на Salmonella и E.coli 0157:#7 прошли испытания в Ассоциации научно-исследовательс­кого института химиков-аналитиков (AOACRI) и были им аттестованы.

Вторая серийно выпускаемая группа комплектов для ЦРП — это комплект Probelia (фирма Sanofi, Франция), где используется традиционная ЦРП с последующим имму­нологическим анализом и системой колориметрического определения Salmonella и Listeria.

Последняя выпускаемая система для ЦРП — это система TaqMan (фирма Perkin- Elmer, США). В ней используется новая зондовая система, включающая метку TaqMan Label Она не флюоресцирует в исходном виде, но после того, как зонд связан между праймерами ЦРП, на него может действовать фермент полимераза ДНК, используе­мый в ЦРП для формирования флюоресцирующего конечного продукта. Эта флюорес­ценция определяется с помощью специальной системы обнаружения. Выпускаются ком­плекты TaqMan для Salmonella, разрабатываются комплекты для Listeria и E. coli 0157. Одна из наиболее интересных перспектив применения TaqMan — это количественное определение. В настоящее время все системы на основе ЦРП служат для определения наличия или отсутствия микроорганизмов, а методики и приборы TaqMan могут дать информацию о фактической численности микроорганизмов, то есть ЦРП здесь при­меняется для их быстрого подсчета.

Выделение микроорганизмов из пищевых продуктов и их концентрирование

В последние годы наблюдается значительный интерес к потенциальным возможностям выделения микроорганизмов из пищевых продуктов и последующего концентрирова­ния их для получения более высокого их количества в единице объема. Этот интерес вызывай тем, что многие существующие методы экспресс-тестирования имеют огра­ниченную чувствительность — например, 104/мл для АТФ-люминесценции, 106/мл — для электрических измерений, 105-106/мл — для иммунологического анализа и ДНК- зондов, около 103/мл — для существующих комплектов на основе ЦРП. Эти уровни чувствительности означают, что период роста, требуемый обычно перед экпресс-опре- делением, может значительно увеличить общее время анализа.

Один из способов решения этой проблемы связан с отделением и концентрирова­нием микроорганизмов из пищевых продуктов, чтобы можно было определять микро­организмы в более высокой концентрации. Дополнительное преимущество заключает­ся в том, что клетки микроорганизмов могут быть отделены от пищевой матрицы, которая в некоторых случаях может содержать материалы, мешающие определению. Простой пример использования концентрирования — это анализ чистых жидкостей (воды, прозрачных безалкогольных напитков, вин, пива и т. п.), в которых уровни за­грязнения обычно очень низки. Поэтому для концентрирования микроорганизмов в небольшой зоне большие их объемы подвергают мембранному фильтрованию. Задер­жанные микроорганизмы могут затем быть проанализированы. Подробный анализ ме­тодов концентрирования приведен в работе [11]. Можно выделить пять категорий та­ких методов: фильтрация, центрифугирование, фазовое разделение, электрофорез и иммунные методы.

Из этих категорий стадии промышленного производства для применения в анализе твердых пищевых продуктах достигли лишь иммунные методы. Иммуномагнитное отделение основано на покрытии маленьких магнитных частиц специфическими анти­телами для определенной клетки. Покрытые частицы могут быть добавлены в пище­вую суспензию или питательную среду, и в случае присутствия определяемых клеток они прикрепляются к антителам на этих частицах.

Применение магнитного поля удерживает частицы с прикрепленными к ним клет­ками, позволяя слить избыток жидкости и пиЩевые остатки, и, тем самым, отделить клетки от пищевой матрицы и сконцентрировать их. Такая система выпускается ком­паниями Dynal (Норвегия), LabM (Великобритания) и Denka (Япония), а автомати­зированную систему на основе такой процедуры производит Foss Electric (EIAFOSS). Комплекты для Salmonella, Listeria, Е. coli 0157, других производящих вероцитотоксин Е. coli и Campylobacter производят разные фирмы. Системы, реализующие методы иммуномагнитного разделения для определения присутствия Е. coli 0157, нашли ши­рокое применение, и во многих странах эти методы стали стандартными.

Распознавание и определение характеристик микроорганизмов

После выделения микроорганизмов из пищевого продукта иногда необходимо устано­вить, какой именно это микроорганизм. Это особенно важно, если предполагается, что это патоген. Традиционно в методах идентификации использовались биохимические или иммунологические анализы, а также очищенные микроорганизмы. Прогресс мо­лекулярной биологии сделал возможным идентификацию микроорганизмов по струк­туре их ДНК. Чувствительность методов, основанных на ДНК, фактически делает возможной идентификацию до уровня ниже, чем вид (обычно эту процедуру называ­ют характеризацией или субтипированием). Субтипирование — это новый мощный инструмент, используемый микробиологами не только для обозначения микроорга­низма, но и для установления его происхождения. Поэтому в некоторых случаях можно выделить микроорганизм в готовом продукте, а затем с помощью структури­рованной серии тестов найти, было ли его источником определенное сырье, среда в производственной зоне или плохо вымытые части оборудования.

Разработан ряд основанных на ДНК методов анализа, которые делают возможным субтипирование (многие из них рассмотрены в [17]), однако лишь один метод был полностью автоматизирован и стал доступен для микробиологов лабораторий пище­вых предприятий. Это риботипирование с помощью прибора Qualicon RiboPrinter (фир­мы Qualicon, США). В этот полностью автоматизированный прибор подают выделенные очищенные колонии бактерий и получают образцы диапазонов ДНК (RiboPrint-структуры), которые автоматически сравнивают с базами данных для идентификации и характеризации. Метод успешно применен в пищевой промышленности для определе­ния загрязнений, выявления источников и путей загрязнения, а также проверки аутен­тичности культур [12].

Будущее микробиологических методов

Традиционные микробиологические методы в последние несколько десятилетий не очень существенно изменились. Для подсчета, обнаружения и идентификации микро­организмов в пробах микробиологи в основном продолжают использовать длительное обогащение и методы, основанные на росте микроорганизмов на агаре. По мере разви­тия технологии пищевых производств постоянно растет потребность во все более быс­тром получении микробиологических данных.

Ускоренное развитие рынка охлажденных продуктов и производство продуктов с относительно короткими сроками хранения привели к созданию ускоренных автома­тических методов и систем для их реализации. Их применение делает возможным: а) тестирование сырья перед использованием; б) контроль санитарно-гигиенического состояния технологических линий в реальном времени и в) тестирование готовых продуктов за более короткое время. Все это должно привести к созданию продуктов более высокого качества с увеличенными сроками хранения.

Все рассмотренные в этой главе методы в настоящее время используются в лабора­ториях пищевых производств. Некоторые методы (например, электрические) разра­ботаны, внедрены и используются уже достаточно давно, тогда как другие (например, ЦРП) разработаны гораздо позже. Все эти методы имеют хорошие перспективы, при­няты в качестве стандартных и не являются совершенно новыми. Некоторые произво­дители пищевых продуктов уже начинают понимать преимущества комбинирования различных экспресс-методов для получения еще более быстрых результатов. Приме­ром может служить использование ферментного иммунологического анализа для об­наружения присутствия подвидов Listeria с последующим использованием зондов из нуклеиновых кислот (специфичных для разновидностей микроорганизмов) для под­тверждения присутствия или отсутствия L. monocytogenes.

Одной из проблем некоторых экспресс-методов является их недостаточная чув­ствительность. Во многих случаях это означает, что перед их использованием требует­ся длительное обогащение. Исследования методов отделения и концентрирования микроорганизмов из пищевых проб позволили бы отделить микроорганизмы от пище­вых остатков и сконцентрировать их, исключая необходимость в длительных процеду­рах инкубации. Разработки в области ДНК-методов для обнаружения и идентифика­ции/характеризации ведут к созданию новых средств для микробиологов пищевых производств. Несомненно, что в будущем они дадут такие возможности для анализа, которые сегодня трудно себе представить.

Литература для всего раздела " Традиционные и ускоренные методы микробиологического анализа."

  1.  ALEXANDER, М. К, KHAN, М. S. and DOW, С. S., (1981) Rapid screening for bacteriuria using a particle counter, pulse-height analyser and computer. Journal of Clinical Pathology 34, pp. 194-198.
  2.  ANON, (1986) Microorganisms in Foods 2. Sampling for microbiological analysis: Principles and specific applications, ICMSF. Blackwell Scientific, Oxford.
  3.  BACK, J. P. and KROLL, R. G., (1991) The differential fluorescence of bacteria stained with acridine orange and the effect of heat Journal of Applied Bacteriology, 71, pp. 51-58.
  4.  BANKES, P., (1991) An evaluation of the Bactrac 4100. Campden Food & Drink Research Association Technical Memorandum 628, Campden Food & Drink Research Association, UK.
  5.  BANKES, P. and ROSE, S. A., (1989) Rapid detection of Staphylococcal enterotoxins in foods with a modification of the reversed passive latex agglutination assay, Journal of Applied Bacteriology, 67, pp. 395-399.
  6.  BANKES, P., ROWE, D., and BETTS, R. P., (1991) The rapid detection of yeast spoilage using the Chemflow system. Campden Food & Drink Research Association Technical Memorandum 621, Campden Food & Drink Research Association, UK.
  7.  BANKS, J. G., ROSSITER, L. M. and CLARK, A. E., (1989) Selective detection of Pseudomonas in foods by a conductance technique // Rapid Methods and Automation in Microbiology and Immunology Florence 1987 / Balows, A., Tilton, R. C. and Turano, A. (eds). — Brixia Academic Press, Brescia, pp. 725-727.
  8.  BAUMGART, J., FRICKLE, K. and KUY, C., (1980) Quick determination of surface bacterial content of fresh meat using a bioluminescence method to determine adenosine triphosphate // Fleischwirtschaft, 60, pp. 266-270.
  9.  BENNETT, A. R., GREENWOOD, D., TENNANT, C., BANKS, J. G. and BETTS, R. P., (1998). Rapid and Definitive detection of Salmonella in foods by ЦРП, Letters in Applied Microbiology, 26(6), pp. 437-441.
  10.  BETTS, R. P., (1993) Rapid electrical methods for the detection and enumeration of food spoilage yeasts, International Bio deterioration and Biodégradation, 32, pp. 19-32.
  11.  BETTS, R. P., (1994) The separation and rapid detection of microorganisms // Rapid Methods and Automation in Microbiology and Immunology/Spencer, R. C., Wright, E. P. and Newsom, S. W. B., (eds). — Intercept Press, Hampshire, England. — P. 107-120,
  12.  BETTS, R. P. (1998) Foodborne bacteria in the spotlight // Laboratory News, September, pp. A6-A7.
  13.  BETTS, R. P., and BANKES, P., (1988) An evaluation of the Autotrak — A rapid method for the enumeration of microorganisms. Campden Food and Drink Research Association Technical Memorandum 491, Campden and Chorleywood Food Research Association, UK.
  14.  BETTS, R. P., BANKESM P., FARR, L. and STRINGER, M. F., (1988) The detection of irradiated foods using the Direct Epifluorescent Filter Technique // Journal of Applied Bacteriology, 64, pp. 329-335.
  15.  BETTS, R. P., BANKES, P. and BANKS, J. G., (1989) Rapid enumeration of viable micro­organisms by staining and direct microscopy // Letters in Applied Microbiology, 9, pp. 199-202.
  16.  BETTS, R. P., BANKES, P. and GREEN, J., (1991) An evaluation of the Tecra enzyme immunoassay for the detection of Listeria in foods // Food Safety and Quality Assurance: Applications of Immunoassays Systems /Morgan, M. R. A, Smith, C. J. and Williams P. A. (eds). — Elsevier, London, pp. 283-298.
  17.  BETTS, R. P., STRINGER, M., BANKS, J. G. and DENNIS, C., (1995) Molecular Methods in Food Microbiology // Food Australia, 47(7), pp. 319-322.
  18.  BILLTE, M. and REUTER, G., (1985) The bioluminescence technique as a rapid method for the determination of the microflora of meat // InternationalJournal of Food Microbiology, 2, pp. 371-381.
  19.  BLACKBURN, C. and STANNARD, C. J., (1989) Immunological detection methods for Salmonella in foods // Rapid Microbiological Methods for Foods, Beverages and Pharmaceuticals. Society for Applied Bacteriology, Technical Series 25, Stannard, C. L., Pettit, S. B. and Skinner, F. A. (eds). — Blackwell Scientific, Oxford.
  20.  BLACKBURN, C., CURTIS, L. M., HUMPHESON, L. and PETITT, S., (1994) Evaluation of the Vitek Immunodiagnostic Assay System (VIDAS) for the detection of Salmonella in foods // Letters in Applied Microbiology, 19(1), p. 32.
  21.  BOBBITT, J. A. and BETTS, R. P., (1991) Evaluation of Accuprobe Culture Confirmation Test for Listeiia monocytogenes // Campden Food & Drink Research Association Technical Memorandum 630, Campden Food & Drink Research Association, UK.
  22.  BOBBITT, J. A. and BETTS, R. P., (1993) Evaluation of the VIDAS Listeria system for the detection of Listeria in foods // Campden Food and Drink Research Association Technical Memorandum 674, Campden and Chorleywood Food Research Association, UK.
  23.  BOLTON, F. J. and GIBSON, D. M., (1994) Automated electrical techniques in microbiological analysis // Rapid Analysis Techniques in Food Microbiology /ed. Patel, P. — Blackie Academic, London.
  24.  BOLTON, F. J. and POWELL, S. J., (1993) Rapid methods for the detection of Salmonella and Campylobacter in meat products // European Food and Drink Review, Autumn, pp. 73-81.
  25. 45. BOSSUYT, R. (1981) Bacteriological quality determination of raw milk by an ATP assay technique // Milchwissenschaft, 36, S. 257-260.
  26.  BREED, R. S. and BREW, J. D., (1916) Counting bacteria by means of the microscope // Technical Bulletin, 49. New York Agricultural Experimental Station, Albany, New York.
  27.  CANDLISH, A., (1992) Rapid testing methods for Salmonella using immunodiagnostic kits. Presented at: Complying with Food Legislation through Immunoassay, February 1992, Glasgow.
  28.  CARTER, N. R and MEYER, E. W., (1990) Introduction to the principles of flow cytometry // Flow cytometry, a practical approach /Ormerod, M. G. (ed.). — IRL Press, Oxford, pp. 1-28.
  29.  CLARK, C., CANDLISH, A. A. G. and STEELL, W., (1989) Detection of Salmonella in foods using a novel coloured latex test // Food and Agricultural Immunology, pp. 13-19.
  30.  CLAYDEN, J. A., ALCOCK, S. J. and STRINGER, M. F., (1987) Enzyme linked immuno- absorbant assays for the detection of Salmonella in foods // Immunological Techniques in Microbiology. Society for Applied Bacteriology Technical Series 24 / Grange, J. M., Fox, A. and Morgan, N. L. (eds). — Blackwell Scientific, Oxford, pp. 217-230.
  31.  CONNOLLY, P., LEWIS, S. J. and CORRY, J. E. L., (1988) A medium for the detection of yeasts using a conductimetric method // InternationalJournal of Food Microbiology, 7, pp. 31-50.
  32.  COOMBES, P. (1990) Detecting Salmonella by conductance // Food Technology International Europe, No. 4229, pp. 241-246.
  33.  COOTES, R. L. and JOHNSON, R., (1980) A fluorescent staining technique for determination of viable and non-viable yeast and bacteria in wines //Food Technology in Australia, 32, pp. 522-524.
  34.  COUSINS, D. L. and MARLATT, F., (1990) An evaluation of a conductance method for the enumeration of enterobacteriaceae in milk // Journal of Food Protection, 53, pp. 568-570.
  35.  CURIALE, M. S., FLOWERS, R. S, MOZOLA, M. A. and SMITH, A. E., (1986) A commercial DNA probe based diagnostic for the detection of Salmonella in food samples // DNA Probes: Applications in Genetic and Infectious Disease and Cancer/Lerman, L. S. (ed.).— Cold Spring Harbour Laboratory, New York, pp. 143-148.
  36.  CURIALE, M. S, KLATT, M. L., ROBINSON, B. J. and BECK, L. T., (1990a) Comparison of colorimetric monoclonal enzyme immunoassay screening methods for detection of Salmonella in foods // Journal of the Association of Official Analytical Chemists, 73, pp. 43-50.
  37.  CURIALE, M. S., MCIVER, D., WEATHERSBY, S. and PLANER, C., (1990b) Detection of Salmonella and other enterobacteriaceae by commercial deoxyribonucleic acid hybridization and enzyme immunoassay kits // Journal of Food Protection, 53, pp. 1037-1046.
  38.  DATTA, A. R., WENTZ, B. A., SHOOK, D. and TRUCKSESS, M. W., (1988) Synthetic oligonucleotide probes for detection of Listeria monocytogenes // Applied and Environmental Microbiology, 54, pp.2933-2937.
  39.  DAVIS, S. C. and JONES, K. L., (1997) A study of the recovery of microorganisms from flour. — Campden and Chorleywood Food Research Association R&D Report No. 51, Campden and Chorleywood Food Research Association, UK.
  40.  DIJKMAN, A. J., SCHIPPER, C. J., BODY, C. J. and POSTHUMUS, G., (1969) The estimation of the number of cells in farm milk // Netherlands Milk and Dairy Journal, 23, pp. 168-181.
  41.  DONNELLY, C. W. and BAIGENT, G. T. (1986) Method for flow cytometric detection of Listeiia monocytogenes in milk //Applied and Environmental Microbiology, 52, pp. 689-695.
  42.  DRUGGAN, P, FORSYTHE, S. J. and SILLEY, P., (1993) Indirect impedance for microbial screening in the food and beverage industries // New Techniques in Food and Beverage Microbiology / (eds R. G. Kroll and A. Gilmour). — SAB Technical Series 31, London, Blackwell.
  43.  DUMAIN, P. P., DESNOUVEAUZ, R., BLOCH, L., LECONTE, C., FUHRMANN, B., DE COLOMBEL, E., PLESSIS, M. C. and VALERY, S., (1990) Use of flow cytometry for yeast and mould detection in process control of fermented milk products: The Chemflow System — A Factory Study // Biotech Forum Europe, 7(3), pp. 224-229.
  44.  EASTER, M. C. and GIBSON, D. M., (1985) Rapid and automated detection of Salmonella by electrical measurement // Journal of Hygiene, Cambridge, 94, pp. 245-262.
  45.  EASTER, M. C. and GIBSON, D. M., (1989) Detection of microorganism by electrical measurements // Rapid Methods in Food Microbiology. Progress in Industrial Microbiology, Vol. 26 / Adams, M. R. and Hope, C. F. A. (eds). — Elsevier, pp. 57-100.
  46.  EDEN, R. and EDEN, G., (1984) Impedance Microbiology. — Research Studies Press, Letchworth, Herts, England.
  47.  FITTS, R., (1985) Development of a DNA-DNA hybridization test for the presence of Salmonella in foods // Food Technology, 39, pp. 95-102.
  48.  FLOWERS, R. S., KLATT, M. J. and KEELAN, S. L., (1988) Visual immunoassay for the detection of Salmonella in foods. A collaborative study // Journal of the Association of Official Analytical Chemists, 71, pp. 973-980.
  49.  FLOWERS, R. S., MOZOLA, M. A., CURIALE, M. S., GABIS, D. A. and SILLIKER, J. H.,Comparative study of DNA hybridization method and the conventional cultural procedure for detection of Salmonella in foods // Journal of Food Science, 52, pp. 842-845.
  50.  FRANCISCO, D. D., MAH, R. A. and RABIN, A. C., (1973) Acridine orange epifluorescent technique for counting bacteria in natural waters // Transactions of the American Microscopy Society, 92, pp. 416-421.
  51.  GRIFFITHS, M. W., (1995) Bioluminescence and the food industry //Journal of Rapid Methods and Automation in Microbiology, 4, pp. 65-75.
  52.  GUTTERIDGE, C. S. and ARNOTT, M. L., (1989) Rapid Methods: An Over the Horizon View // Rapid Methods in Microbiology. Progress in Industrial Microbiology, Vol. 26 / Adams, M. R. and Hope, C. F. A. (eds). — Elsevier, pp. 297-319.
  53.  HADFIELD, S. G., JOVY, N. F. and MCILLMURRAY, M. B., (1987b) The application of a novel coloured latex test to the detection of Salmonella // Immunological Techniques in Microbiology. Society for Applied Bacteriology Technical Series 24 / Grange, J. M., Fox, A. and Morgan, N. L. (eds). — Blackwell Scientific, Oxford, pp. 145-152.
  54.  HADFIELD, S. G., LANE, A. and MCILLMURRAY, M. B., (1987a) A novel coloured latex test for the detection and identification of more than one antigen // Journal of Immunological Methods, 97, pp. 153-158.
  55.  HILL, W. E., MADDEN, J. M., MCCARDELL, B. A., SHAH, D. B., JAGOW, J. A., PAYNE, W. L. and BOUTIN, B. K., (1983a) Foodborne entertoxigenic Esch coli: detection and enumeration by DNA colony hybridization // Applied and Environmental Microbiology, 46, pp. 636-641.
  56.  HILL, W. E., PAYNE, W. L. and AULISIO, C. C. G., (1983b) Detection and enumeration of virulent Yersinia enterocolitica in food by colony hybridisation // Applied and Environmental Microbiology, 46, pp. 636-641.
  57.  HILL, W. E., WENTZ, B. A., JAGOW, J. A., PAYNE, W. L. and ZON, G., (1986) DNA colony hybridisation method using synthetic oligonucleotides to detect enterotoxigenic Esch. Coli: a collaborative study //Journal of the Association of Official Analytical Chemists, 69, pp. 531-536.
  58.  HOBBIES, J. F., DALEY, R. J. and JASPER, S., (1977) Use of nucleoport filters for counting bacteria by fluorescence microscopy //Applied and Environmental Microbiology, 33, pp. 1225— 1228.
  59.  HOLAH, J. T., (1989) Monitoring the Hygienic Status of Surfaces // Hygiene — The issues for the 90', Symposium Proceedings, Campden and Chorleywood Food Research Association, UK.
  60.  HOLAH, J. T., BETTS, R. P. and THORPE, R. H., (1988) The use of direct epifluorescent microscopy (DEM) and the direct epifluorescent filter technique (DEFT) to assess microbial populations on food contact surfaces // Journal of Applied Bacteriology, 65, pp. 215-221.
  61.  HOLBROOK, R., ANDERSON, J. M., BAIRD-PARKER, A. C. and STUCHBURY, S. H., (1989) Comparative evaluation of the Oxoid Salmonella Rapid Test with three other rapid Salmonella methods // Letters in Applied Microbiology, 9, pp. 161 -164.
  62.  HUERNNEKENS, F. M. and WHITELEY, H. R., (1960) // Comparative Biochemistry / Florkin, M. and Mason, H. S. (eds), Vol. 1. — Academic Press, New York, p. 129.
  63.  HUGHES, D., SUTHERLAND, P. S., KELLY, G. and DAVEY, G. R., (1987) Comparison of the Tecra Salmonella tests against cultural methods for the detection of Salmonella in foods // Food Technology in Australia, 39, pp. 446-454.
  64.  HUTTER, K. J. and EIPEL, H. E., (1979) Rapid determination of the purity of yeast cultures by immunofluorescence and flow cytometry // Journal of the Institute of Brewing, 85, pp.21-22.
  65.  HYSERT, D. W., LOVECSES, F. and MORRISON, N. M., (1976) A firefly bioluminescence ATP assay method for rapid detection and enumeration of brewery microorganisms // Journal of the American Society of Brewing Chemistry, 34, pp. 145-150.
  66.  JAGOW, J. and HILL, W. E., (1986) Enumeration by DNA dolony hybridisation of virulent Yersinia enterocolitica colonies in artificially contaminated food // Applied and Environmental Microbiology, 51, pp. 411-413.
  67.  JONES, J. G. and SIMON, B. M., (1975) An investigation of errors in direct counts of aquatic bacteria by epifluorescence microscopy with reference to a new method of dyeing membrane filters //Journal of Applied Bacteriology, 39, pp. 1-13.
  68.  JONES, K. L. and BETTS, R. P., (1994) The EIAFOSS system for rapid screening of Salmonella from foods. — CampdenFood & Drink Research Association Technical Memorandum 709, Campden and Chorleywood Food Research Association, UK.
  69.  JONES, K. L, MACPHEE, S. TURNER, A. and BETTS, R. P., (1995a) An evaluation of the Oxoid Listeria Rapid Test incorporating clearview for the detection of Listeria from foods. — Campden and Chorleywood Food Research Associa-tion R&D Report No 19, Campden & Chorleywood Food Research Association, UK.
  70.  JONES, K. L., MACPHEE, S., TURNER, A. and BETTS, R. P., (1995b) An evaluation of Pathstick for the detection of Salmonella from foods. — Campden & Chorleywood Food Research Association R&D Report No 11, Campden and Chorleywood Food Research Association, UK.
  71.  KAEREBY, F. and ASMUSSEN, B., (1989) Bactoscan — Five years of experiences // Rapid methods and Automation in Microbiology and Immunology / Balows, A., Tilton, R. C. and Turano, A. (eds). — Florence 1987, Brixia Academic Press, Brescia, pp. 739-745.
  72.  KARL, D. M., (1980) Cellular nucleotide measurements and applications in microbial ecology // Microbiological Review, 44, pp. 739-796.
  73.  KLINGER, J. D. and JOHNSON, A. R., (1988) A rapid nucleic acid hybridisation assay for Listeria in foods // Food Technology, 42, pp. 66-70.
  74.  KLINGER, J. D., JOHNSON, A., CROAN, D., FLYNN, P., WHIPPIE, K., KIMBALL, M., LAWNE, J. and CURIALE, M., (1988) Comparative studies of a nucleic acid hybridisation assay for Listeria in foods //Journal of the Association of Official Analytical Chemists, 73, pp. 669- 673.
  75.  KRICKA, L. J. and WHITEHEAD, T. P., (1984) Luminescent immunoassays: new labels for an established technique // Diagnostic Medicine, May, pp. 1-8.
  76.  KYRIAKUDES, A., BELL, C. and JONES, K. L., (eds). (1996) A Code of Practice for Microbiology Laboratories Handling Food Samples. — Campden & Chorleywood Food Research Association Guideline No. 9, Campden and Chorleywood Food Research Association, UK.
  77.  LAROCCO, K. A., GALLIGAN, P., LITTLE, K. J. and SPURGASH, A., (1985) A rapid bioluminescent ATP method for determining yeast concentration in a carbonated beverage // Food Technology, 39, pp. 49-52.
  78.  LEVIN, G. V., GLENDENNING, J. R., CHAPELLE, E. W., HEIM, A. H. and ROCECK, E., (1964) A rapid method for the detection of microorganisms by ATP assay: its possible application in cancer and virus studies // Bioscience, 14, pp. 37-38.
  79.  LITTLE, K. J. and LAROCCO, K. A., (1986) ATP screening method for presumptive detection of microbiologically contaminated carbonated beverages //Journal of Food Science, 51, pp. 474- 476.
  80.  LITTLE, K. J., PIKELIS, S. and SPURGASH, A., (1986) Bioluminescent ATP assay for rapid estimation of microbial numbers in fresh meat // Journal of Food Protection, 49, pp. 18-22.
  81.  LOHNEIS, M., JASCHKE, K. H. and TERPLAN, G., (1987) An immunoluminomtric assay (ILMA) for the detection of staphylococcal enterotoxins // International Journal of Food Microbiology, 5, pp. 117—127.
  82.  MCCLELLAND, R. G. and PINDER, A. C., (1994) Detection of Salmonella typhimurium in dairy products with flow cytometry and monoclorical antibodies // Applied and Environmental microbiology, 60(12), p. 4255.
  83.  MACRAE, R. M., (1964) Rapid Yeast Estimations // Proceedings of European Brewing Convention Brussels 1963. — Elsevier Publishing, Amsterdam, pp. 510-512.
  84.  MCELROY, W. D., (1947) The energy source for bioluminescence in an isolated system // Proceedings of the National Academy of Science, USA, 33, pp. 342-345.
  85.  MCELROY, W. D. and STREFFIER, B. L., (1949) Factors influencing the response of the bioluminescent reaction to adenosine triphosphate //Archives of Biochemistry, 22, pp. 420-433.
  86.  MATTINGLY, J. A., BUTMAN, B. T., PLANK, M., DURHAM, R. J. and ROBINSON, B. J.Rapid monoclonal antibody based enzyme-linked immunosorbant assay for the detection of Listeria in food products // Journal of the Association of Official Analytical Chemists, 71, pp. 679-681.
  87.  MORRIS, J. G., WRIGHT, A. C., ROBERTS, D. M., WOOD, P. K., SIMPSON, L. M. and OLIVER, J. D., (1987) Identification of environmental Bibrio vulnificus isolates with a DNA probe for the cytotoxin-hemolysin gene //Applied and Environmental Microbiology, 53, pp. 193— 195.
  88.  MOZOLA, M., HALBERT, D., CHAN, S., HSU, H. Y., JOHNSON, A., KING, W., WILSON, S., BETTS, R. P., BANKES, P. and BANKS, J. G., (1991) Detection of foodborne bacterial pathogens using a colorimetric DNA hybridisation method // Genetic Manipulation Techniques and Applications. Society for Applied Bacteriology Technical Series No. 28 / Grange, J. M., Fox, A. and Morgan, N. L. (eds). — Blackwell Scientific, Oxford, pp. 203-216.
  89.  MULDROW, L. L., TYNDALL, R. L. and FLIERMANS, C. B., (1982) Application of flow cytometry to studies of free-living amoebae // Applied and Environmental Microbiology, 44(6), pp.1258-1269.
  90.  NEAVES, P., WADDELL, M. J. and PRENTICE, G. A., (1988) A medium for the detection of Lancefield group D cocci in skimmed milk powder by measurement of conductivity changes // Journal of Applied Bacteriology, 65, pp. 437-448.
  91.  NOTERMANS, S., HEUVELMAN, K. J. and WERNARS, K., (1988) Synthetic enterotoxin B, DNA probes for the detection of enterotoxigenie Staphylococcus aureus // Applied and Environmental Microbiology, 54, pp. 531-533.
  92.  OPPONG, D. and SNUDDEN, B. H., (1988) Comparison of acridine orange staining using fluorescence microscopy with traditional methods for microbiological examination of selected dry food products // Journal of Food Protection, 51, pp. 485-488.
  93.  OWENS, J. D., THOMAS, D. S., THOMPSON, P. S. and TIMMERMAN, J. W., (1989) Indirect conductimetry: A novel approach to the conductimetric enumeration of microbial populations // Letters in Applied Microbiology, 9, pp. 245-250.
  94.  PATCHETT, R. A., BACK, J. P., PINDER, A. C. and KROLL, R. G., (1991) Enumeration of bacteria in pure cultures and foods using a commercial flow cytometer // Food Microbiology, 8, pp. 119-125.
  95.  PETTIT, S. B., (1989) A conductance screen for enterobacteriaceae in foods // Rapid Microbiological Methods for Foods Beverages and Pharmaceuticals / Stannard, C. J., Petitt, S. B., Skinner, F. A. (eds). — Blackwell Scientific, Oxford, pp. 131-142.
  96.  PETTIPHER, G. L., (1987) Detection of low numbers of osmophilic yeasts in creme fondant within 24 h using a pre-incubated DEFT count // Letters in Applied Microbiology, 4, pp. 95-98.
  97.  PETTIPHER, G. L., (1991) Preliminary evaluation of flow cytometry for the detection of yeasts in soft drinks // Letters in Applied Microbiology, 12, pp. 109-112.
  98.  PETTIPHER, G. L. and RODRIGUES, U. M., (1981) Rapid enumeration of bacteria in heat treatment milk and milk products using a membrane filtration-epifluorescence microscopy technique //Journal of Applied Bacteriology, 50, pp. 157-166.
  99.  PETTIPHER, G. L. and RODRIGUES, U. M., (1982) Semi-automated counting of bacteria and somatic cells in milk using epifluorescence microscopy and television image analysis // Journal of Applied Bacteriology, 53, pp. 323-329.
  100.  PETTIPHER, G. L., MANSELL, R., MCKINNON, C. H. and COUSINS, C. M., (1980) Rapid membrane filtration-epifluorescence microscopy technique for the direct enumeration of bacteria in raw milk // Applied and Environmental Microbiology, 39, pp. 423-429.
  101.  PETTIPHER, G. L., WILLIAMS, R. A. and GUTTERIDGE, C. S., (1985) An evaluation of possible alternative methods to the Howard Mould Count // Letters in Applied Microbiology, l,pp. 49-51.
  102.  PHILLIPS, A. P. and MARTIN, K. L., (1988) Limitations of flow cytometry for the specific detection of bacteria in mixed populations //Journal of Immunological Methods, 106, pp. 109—117.
  103.  PINDER, A. C., PURDY, P. W, POULTER, S. A. G and CLARK, D. C., (1990) Validation of flow cytometry for rapid enumeration of bacterial concentrations in pure cultures // Journal of Applied Bacteriology, 69, pp. 92-100.
  104.  PONNAMPERUMA, C., SAGAN, C. and MARINER, R., (1963) Synthesis of adenosine triphosphate under possible primitive earth conditions // Nature, 199, pp. 222-226.
  105.  RICHARDS, J. C. S., JASON, A. C., HOBBS, G., GIBSON, D. M. and CHRISTIE, R. H., (1978) Electronic measurement of bacterial growth // Journal of Physics, E: Scientific Instruments, 11, pp. 560-568.
  106.  RODRIGUES, U. M. and KROLL, R. G., (1986) Use of the direct epifluorescent filter technique for the enumeration of yeasts // Journal of Applied Bacteriology, 61, pp.139-144.
  107.  RODRIGUES, U. M. and KROLL, R. G., (1988) Rapid selective enumeration of bacteria in foods using a microcolony epifluorescence microscopy technique // Journal of Applied Bacteriology, 64, pp. 65-78.
  108.  RODRIGUES, U. M. and KROLL, R. G., (1989) Microcolony epifluorescence microscopy for selective enumeration of injured bacteria in frozen and heat treated foods // Applied and Environmental Microbiology, 55, pp. 778-787.
  109.  ROSE, S. A. and STRINGER, M. F., (1989) Immunological Methods // Rapid Methods in Food Microbiology. Progress in Industrial Microbiology, Vol. 26/Adams, M. R. and Hope, C. F. A. (eds). — Elsevier, pp. 121-167.
  110.  ROSE, S. A., BANKES, P. and STRINGER, M. F., (1989) Detection of staphylococcal enterotoxins in dairy products by the reversed passive latex agglutination (Setrpla) kit // InternationalJournal of Food Microbiology, 8, pp. 65-72.
  111.  SCHUTZBANK, T. E., TEVERE, V. and CUPO, A., (1989) The use of bioluminescent bacteriophages for the detection and identification of Salmonella in foods // Rapid methods and Automation in Microbiology and Immunology, Florence 1987 / Balows, A., Tilcon, R. C. and Turano, A. (eds). — Brixia Academic Press, Brescia, pp. 241-251.
  112.  SELIGER, H. and MCELROY, M. D., (1960) Spectral emission and quantum yield of firefly bioluminescence // Archives of Biochemistry and Biophysics, 88, pp. 136-141.
  113.  SHARPE, A. N., WOODROW, M. N. and JACKSON, A. K., (1970) Adenosine triphosphate levels in foods contaminated by bacteria // Journal of Applied Bacteriology, 33, pp. 758-767.
  114.  SHAW, B. G., HARDING, C. D., HUDSON, W. H. and FARR, L., (1987) Rapid estimation of micobial numbers in meat and poultry by the direct epiflourescent filter technique // Journal of Food Protection, 50, pp. 652-657.
  115.  SHAW, S., (1989) Rapid methods and quality assurance in the brewing industry // Rapid Methods in Food Microbiology, Progress in Industrial Microbiology, Vol. 26 / Adams, M. R. and Hope, C. F. A. (eds). — Elsevier, pp. 273-296.
  116.  SKARSTAD, K., STEEN, H. B. and BOYE, E., (1983) Cell cycle parameters of growing Eschenchia coli. B/r studied by flow cytometry //Journal of Bacteriology, 154, pp. 652-656.
  117.  SKJERVE, E. and OLSVIK, O., (1991) Immunomagnetic separation of Salmonella from foods // InternationalJournal of Food Microbiology, 14, pp. 11-18.
  118.  STALKER, R. M., (1984) Bioluminescent ATP analysis for the rapid enumeration ofbacteria- principles, practice, potential areas of inaccuracy and prospects for the Food Industry. — Campden Food and Drink Research Association Technical Bulletin 57, Campden & Chorleywood Food Research Association, UK.
  119.  STANNARD, C.J., (1989) ATP Estimation // Rapid Methods in Food Microbiology. Progress in Industrial Microbiology Vol. 26 / Adams, M. R. and Hope, C. F. A. (eds). — Elsevier.
  120.  STANNARD, C.J. and WOOD, J. M., (1983) The rapid estimation of microbial contamination of raw meat by measurement of adenosine triphosphate (ATP) // Journal of Applied Bacteriology, 55, pp. 429-438.
  121.  STEEN, H. B. and BOYE, E., (1980) Escherichia coli growth studied by dual parameter flow cytophotometry // Journal of Bacteriology, 145, pp. 145-150.
  122.  STEEN, H. B., BOYE, E., SKARSTAD, K., BLOOM, B., GODAL, T. and MUSTAFA, S., (1982) Applications of flow cytometry on bacteria: Cell cycle kinetics, drug effects and quantification of antibody binding // Cytometry, 2(4), pp. 249-256.
  123.  STEWART, G. N., (1899) The change produced by the growth of bacteria in the molecular concentration and electrical conductivity of culture media //Journal of Experimental Medicine, 4, pp. 23S-24S.
  124.  STEWART, G. S. A. B., (1990) A review: In vivo bioluminescence: New Potentials for Microbiology // Letters in Applied Microbiology, 10, pp. 1-9.
  125.  TYNDALL, R. L., HAND, R. E. Jr., MANN, R. C., EVAN, C. and JERNIGAN, R., (1985) Application of flow cytometry to detection and characterisation of Legionella spp. // Applied and Environmental Microbiology, 49, pp. 852-857.
  126.  ULITZUR, S. and KUHN,J., (1987) Introduction of lux genes into bacteria, a new approach for specific determination of bacteria and their antibiotic susceptibility // Proceedings of Xth International Symposium on Bioluminescence and Chemoluminescence, Freiburg, Germany 1986 / Scholmerich, J., Andreesen, A., Kapp, A., Earnst, M., Woods, E. G. (eds). — J. Wiley, pp. 463- 472.
  127.  ULITZUR, S., SUISSA, M. and KUHN, J. C., (1989) A new approach for the specific determination of bacteria and their antimicrobial susceptibilities // Rapid methods and automation in microbiology and immunology / Balows, A., Tilton, R. C. and Turano, A. (eds). — Florence 1987. — Brixia Academic Press, Brescia, pp. 235-310.
  128.  UYTTENDAELE, M., SCHUKKINK, A., VAN GEMEN, B. and DEBEVERE, J., (1996) Comparison of the nucleic acid amplifications system NASBA and agar isolation for the detection of pathogenic Campylobacters in naturally contaminated poultry // Journal of Food Protection, 59(7), pp. 683-689.
  129.  VANDERLINDE, P. B. and GRAU, F. H., (1991) Detection of Listeria spp. in meat and environmental samples by an enzyme-linked immunosorbant assay (ELISA) //Journal of Food Protection, 54, pp. 230-231.
  130.  VECKERT, J., BREEUWER, P., ABEE, T., STEPHENS, P. and NEBE VON CARON, G., (1995) Flow Cytometry Applications in physiological study and detection of foodborne organisms //InternationalJournal of Food Microbiology, 28(2), pp. 317-326.
  131.  VERMUNT, A. E. M., FRANKEN, A. A. J. M., and BEUMER, R. R., (1992) Isolation of Salmonellas by immunomagnetic separation //Journal ofApplied Bacteriology, 72, pp. 112-118.
  132.  WALKER, S. J., (1989) Development of an impedimetric medium for the detection of Yersinia enterocolitica in pasteurised milk // Modem Microbiological Methods for Dairy Products, Proceedings of a seminar organised by the International Dairy Federation / IDF. — pp. 288- 291.
  133.  WALKER, S. J., ARCHER, P. and APPLEYARD, J., (1990) Comparison of Listeria-Tek ELISA kit with cultural procedures for the detection of Listeria species in foods // Food Microbiology, 7, pp. 335-342.
  134.  WERNARS, K. and NOTERMANS, S., (1990) Gene probes for detection of foodborne pathogens // Gene probes for bacteria / Macario, A. J. L. and de Macario, B. C. (eds). — Academic Press, London, pp. 355-388.
  135.  WOLCOTT, M. J., (1991) DNA-based rapid methods for the detection of foodborne pathogens // Journal of Food Protection, 54, pp. 387-401.


Владимир Заниздра

Основатель сайта Baker-Group.net. Более 25-ти лет опыта в кондитерском производстве. Более 20-ти лет опыта управления. Опыт в организации и проектирования производства с нуля. Сайт: baker-group.net/contacts.html Эл. почта Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

Оставить комментарий

Календарь

« Декабрь 2016 »
Пн Вт Ср Чт Пт Сб Вс
      1 2 3 4
5 6 7 8 9 10 11
12 13 14 15 16 17 18
19 20 21 22 23 24 25
26 27 28 29 30 31  

Рекомендуемые материалы